定点标记蛋白如何精准检测in vivo CAR-T阳性率？

In vivo CAR-T正在逐步迈向精细化与差异化。BCMA、CD19、CD20等成熟靶点的持续深耕，夯实血液瘤治疗的研发基础。CD13、DLL3等新靶点的出现，也为AML和实体瘤等领域打开了新的想象空间。递送系统也在不断升级。LVV、LNP主流平台持续更新，功能化VLP、红细胞介导递送、双载体等新型递送策略不断涌现。

与此同时，为了深入理解并优化这种“活细胞药物”在体内的行为，定点标记蛋白技术作为重要的监测与分析工具，作用日益突显。定点标记重组蛋白产品，精准位点标记，显著提升检测的灵敏度、特异性与准确性，加速in vivo CAR-T的临床转化与产业化进程。

01in vivo CAR-T核心优势

In vivo（体内）CAR-T避免了传统体外CAR-T制备的繁琐步骤，如单采血、体外扩增、清淋化疗等，通过病毒载体或非病毒载体将编码CAR的基因直接递送至患者体内的T细胞，实现原位重编程。

“即用型”疗法，无需等待

传统CAR-T疗法需要从患者体内分离T细胞，经过2-4周的体外制备和质检，期间患者可能需要桥接治疗，且必须进行清淋化疗，而in vivo CAR-T完全简化这些步骤。以ESO-T01为例。其使用慢病毒载体，通过单次静脉输注，在患者体内直接生成抗BCMA CAR-T细胞。ESO-T01无需T细胞分离、无需体外制备、无需清淋化疗。研究者披露的信息显示，患者从入组到输注的中位时间仅为8小时37分钟，最短仅需2小时（I001患者），意味着患者在确诊后几乎可以在当天就接受治疗。而传统CAR-T制备周期长达3-4周。

临床应用拓展

in vivo CAR-T不仅在血液肿瘤中展现出疗效，如武汉协和血液科团队在《The Lancet》发表的针对多发性骨髓瘤的早期临床试验结果，显示实现客观缓解率（ORR）达到100%。in vivo CAR-T还被视为攻克实体瘤和治疗自身免疫性疾病（如系统性红斑狼疮、重症肌无力）的潜在疗法。国际制药巨头如礼来、艾伯维、吉利德、阿斯利康等已通过总额超数百亿美元的收购与合作，系统性卡位体内CAR-T赛道。

安全性提高

in vivo CAR-T无需清淋预处理，避免相关的毒副作用。且CAR表达可以是瞬时的（例如LNP递送的mRNA），可能有助于降低长期毒性和致癌风险。

过去两年，In vivo CAR-T细胞疗法发展十分迅猛，已从临床前理论概念迈入早期临床试验阶段。覆盖肿瘤、自身免疫性疾病的不断披露的临床数据，已有病症完全缓解的研究结果，预示着该领域正迎来发展的关键期。同时也面临一系列问题，如长期安全性、基本表达的持续时长，以及这一新模式的监管体系如何建立。

In vivo CAR-T疗法概述（a，流程示意图；b，递送平台；c，实现持久、低免疫原性的新兴发展方向；d，正在开展的临床试验全景；e，临床转化的关键考量与挑战）（源自文献：doi: 10.1016/j.scib.2026.01.075）

0 2 定点标记蛋白赋能CAR-T精准分析

In vivo CAR-T作为一种新的细胞疗法范式，其动态分布、扩增效率、功能持久性、药代动力学等难以用传统方法监测。这直接关系到给药剂量优化、安全性评估及疗效预测。因此，开发高灵敏度、高特异性的监测技术至关重要。定点标记蛋白技术为此提供了强大的解决方案。

定点标记蛋白是指通过基因工程，将短肽或蛋白标签融合到目标蛋白（如CD3D & CD3E、CD4、CD8等）的特定位点。定点标记蛋白解决了蛋白易聚集、批间一致性差、标记效率不稳定等难题，可对CAR的丰度进行精准定量和稳定检测，显著提升检测的灵敏度、特异性与准确性。

利用荧光标记蛋白与细胞表面重要标志物特异性结合的特性，进行流式细胞术检测，是现阶段In vivo CAR-T检测的主流技术。

03定点标记蛋白

基于以上需求，我们凭借20余年的药物靶点试剂开发经验，依托近万种重组蛋白产品库与技术积累，成功搭建定点标记技术平台，开发出一系列专为细胞检测打造的定点标记蛋白产品。荧光标记类型多样，涵盖PE、APC、AF 488、AF 647等，全方位满足不同研究需求，如细胞药物质控和检测、抗体筛选、蛋白互作研究等，为体内CAR-T研发提供高分辨分析工具。

“会发光”的定点标记重组蛋白：

· 高活性： 在特定位置标记，远离活性功能区的小标签上标记，不干扰蛋白活性。

· 高特异性： 标记仅发生于小标签上，无其它背景。

· 高稳定性： 标记数量确定，不影响蛋白结构，保持蛋白天然构象。

· 高一致性： 批内高度均质性，批间高度一致性。

目前开发的定点标记蛋白保持蛋白的天然构象和活性，提高了检测的灵敏度和准确性。

微球结合检测

Human CD3D & CD3E Protein (Site-Specific AF 488-Conjugated)

Cat#: CT038-H2586H-SD

1E5 of mouse Anti-CD3 antibody-conjugated beads (6-8 μm) were stained with a series of concentrations of AF 488-conjugated human CD3D & CD3E Heterodimer Protein. Binding activity was measured by AF 488 fluorescence. The recommended working concentration is 8 μg/mL (end-user titration is recommended for optimal performance).

CAR-293检测

Human CD8 alpha Protein (Site-Specific APC-Conjugated)

Cat#: 10980-H86C-SA

Flow cytometric analysis of anti-CD8A CAR expression. 5e5 of anti-CD8A CAR-293 cells were stained with APC-conjugated human CD8 alpha Protein and negative control protein. APC signal was used to evaluate the binding activity (QC tested).

【参考文献】

1. Ning An, et al. In vivo generation of anti-BCMA CAR-T cells in relapsed or refractory multiple myeloma: a phase 1 study. Nature Medicine, 2026. doi.org/10.1038/s41591-026-04244-6

2. Yuanting Cai, et al. In vivo CAR-T: a paradigm shift in adoptive cell therapy from bench to beside. Science Bulletin, 2026. doi.org/10.1016/j.scib.2026.01.075

3. Yan-Ruide Li and Lili Yang, From bench to body: In vivo CAR engineering in the clinic. Cell Reports Medicine, 2025. doi.org/10.1016/j.xcrm.2025.102337

4. Huang Y, et al. In vivo CAR-T cell therapy: new breakthroughs for cell-based tumor immunotherapy. Hum Vaccin Immunother. 2025. doi:10.1080/21645515.2025.2558403.

5. Xu J, et al. In vivo CAR cell therapy: from bench to bedside. J Hematol Oncol. 2025. doi:10.1186/s13045-025-01759-2.