脂质染色 | 脂滴&胆固醇染色技术全攻略

2025
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脂滴是中性脂的主要贮存场所,包括脂酰甘油和酯化胆固醇。胆固醇是真核细胞细胞膜的重要成分,能够维持膜结构完整性,调节膜流动性...

脂质是一类广泛存在于生物体中的有机分子,它们在细胞的结构和功能中扮演着重要角色。脂滴和胆固醇是脂质的不同形式,它们在结构和功能上有所不同。脂滴是中性脂的主要贮存场所,包括脂酰甘油和酯化胆固醇。在病理情况下,如器官发生脂肪变性,细胞内可能出现脂滴增多,通过脂肪染色能将这些脂滴清晰的显现出来。胆固醇是真核细胞细胞膜的重要成分,能够维持膜结构完整性,调节膜流动性,参与信号转导,在动脉硬化、C型尼曼匹克病(Niemann-Pick disease type C, NPC)、阿尔茨海默病等疾病的发生发展过程中起着重要作用。

脂滴和胆固醇的染色是病理学和细胞生物学研究中的重要技术,用于观察和量化细胞内脂质的积累。目前,脂滴染色使用最广泛的染料包括油红O(Oil Red O)、尼罗红(Nile Red)、苏丹染料(Sudan Dyes)等。胆固醇染色使用最多的染料是菲律平(Filipin III),Filipin已被广泛应用30余年。它可用于标记生物膜结构上及非细胞结构内的自由胆固醇,也能配合应用胆固醇酯化酶,使胆固醇酯水解成自由胆固醇而间接显色。

接下来,小爱就给大家详细介绍脂滴和胆固醇的染色方法。

一、脂滴染色

1、组织切片脂滴油红O染色

1)实验原理

油红O属于偶氮染料,是很强的脂溶剂和染脂剂,与甘油三酯结合呈小脂滴状。脂溶性染料能溶于组织和细胞中的脂类,它在脂类中的溶解度比在溶剂中大。当组织切片置入染液时,染料则离开染液而溶于组织内的脂质(如脂滴)中,使组织内的脂滴呈橘红色。

2)染色步骤[1]

① 油红O染色液配制:

a.母液准备:称取1g油红O,加入100mL异内醇配置成储存液,棕色瓶4℃密封保存。

b.工作液准备:使用前加双蒸水稀释至60%,滤纸过滤后使用。

② 用冰冻切片机切取5μm厚的肝组织切片;

③ 用95%乙醇固定,蒸馏水清洗1min,60%异丙醇浸泡30min;

④ 再用60%油红O染色溶液处理10min和15min,蒸馏水冲洗1min;

⑤ 苏木素复染,用自来水清洗1~3min,光镜下观察肝细胞脂质沉积情况。

3)肝组织油红O染色结果图:

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(注:图片来源于文献[1])

2、细胞脂滴尼罗红染色(以下染色方法仅供参考)

1)实验原理

尼罗红是一种亲脂性荧光染色剂,它是一类环境敏感性荧光染料,能够在富含脂质的环境中产生强烈的荧光,而在水性介质中的荧光强度极小,这种特性使得它成为了一款极重要检测细胞内脂滴的荧光指示剂,可以通过荧光显微镜和流式细胞检测结果。

2)染色步骤

① 尼罗红染色液配制:

a.母液准备:取适量的尼罗红(Mw:318.37g/mol)用无水DMSO充分溶解制备1mM储存液,按照单次用量分装冻存,避免反复冻融,避光保存。

b.工作液准备:用HHBS或生理缓冲液(pH 7.0)将母液按1:1000稀释为1×尼罗红工作液,漩涡混匀。

【注意】:

尼罗红的实际染色浓度请参考文献或实验室体系来调整。以上只做参考。

② 用检测化合物处理细胞一段时间;

③ 离心并调整细胞浓度为1-5×10^5cell/管;

④ 用500µL尼罗红工作液重悬细胞;

⑤ 室温或37ºC避光孵育5-10min;

⑥ 吸掉染色工作液,用HHBS或适当缓冲液清洗细胞;

⑦ 用500µL预热的HHBS或培养基重悬细胞,使细胞密度为1-5×10^5cell/管;

⑧ 荧光显微镜或流式细胞仪检测荧光信号,Ex/Em=552/636nm。

【注意】:

① 对于贴壁细胞,可用HHBS或适当缓冲液清洗细胞,然后直接加入尼罗红工作液孵育;

② 细胞也可预固定,然后用尼罗红工作液染色。

二、胆固醇染色

细胞胆固醇菲律平(Filipin III)染色

1)实验原理

菲律平的主要成分是Filipin III,它可以特异性地与游离胆固醇相互作用,而不与酯化的胆固醇结合。这种特异性结合是由于菲律平分子结构中包含多个共轭双键,使其能够与胆固醇分子的疏水部分形成复合物。当Filipin III与游离胆固醇结合后,其激发光谱波峰约在360nm处,发射光谱波峰约在480nm处。通过检测这些特定波长附近的荧光信号,可以表征细胞内的胆固醇含量。

2)染色步骤[2]

① 菲律平染色液配制:

a.母液准备:1mg菲律平粉末中加入1mL DMSO,完全溶解配置成1mg/mL储存液,按照单次用量分装冻存,避免反复冻融,避光保存。

b.工作液准备:使用前,取适量母液加入到PBS中,稀释成一定浓度的工作液(如0.1mg/mL)备用。

② 将细胞接种于盖玻片中,培养12-18h;

③ 用磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤3次后,在室温下用4%多聚甲醛固定20min;

④ 室温下用0.1mg/mL菲律平III处理细胞30min;

⑤ 细胞再用0.35μg/mL碘化丙啶(PI)染色5min;

⑥ 最后,用共聚焦激光扫描显微镜在405nm处检测菲律平和PI染色的荧光强度。

3)星形胶质细胞/神经元细胞菲律平染色结果图

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(注:图片来源于文献[2])

参考文献

[1] Ji X, Ma Q, Wang X, et al. Digeda-4 decoction and its disassembled prescriptions improve dyslipidemia and apoptosis by regulating AMPK/SIRT1 pathway on tyloxapol-induced nonalcoholic fatty liver disease in mice[J]. J Ethnopharmacol. 2023;317:116827.

[2] Huang Y, Zhang W, Guo X, et al. Cellular cholesterol loss by DHCR24 knockdown leads to Aβ production by changing APP intracellular localization[J]. J Lipid Res. 2023;64(5):100367.

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关键词:
染色,细胞,胆固醇,罗红,荧光

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