细胞活性氧（ROS）检测攻略

活性氧（ROS）是细胞代谢的副产物，包括超氧阴离子自由基、过氧化氢、羟基自由基等。它们在细胞信号传导中起作用，但过量产生会导致细胞损伤，并与多种疾病有关。目前针对ROS的检测方法包括荧光染色法、化学发光法、电子顺磁共振技术（EPR/ESR）、电化学生物传感器、色谱法、分光光度法和基于荧光蛋白的方法（表1）。

表1 常用ROS的检测方法

检测ROS水平对于理解细胞生理功能和环境因素导致的细胞损伤至关重要。今天小爱带大家重点了解荧光染色法检测细胞内ROS的原理及具体操作步骤。

活性氧检测攻略

一、选择合适的探针

DCFH-DA：这是一种常用的荧光探针，通过检测其氧化产物DCF的荧光强度来定量细胞内ROS水平。DCFH-DA本身无荧光，可自由穿过细胞膜，在细胞内被酯酶水解生成DCFH，随后被氧化生成DCF，其荧光强度与ROS水平成正比。

图1 DCFH-DA探针在细胞内的作用机制[1]

二、 实验步骤（以活性氧ROS检测试剂盒为例）

1、装载ROS探针

1）原位装载探针（仅适用于贴壁细胞）

① 细胞准备：检测前一天进行细胞铺板，确保检测时细胞数量小于5×10^5/mL。

② 药物诱导：去除细胞培养液，加入无血清培养基稀释的药物处理，于37℃细胞培养箱内避光孵育，实际诱导时间由药物特性和细胞类型决定。

③（可选）阳性对照：先用无血清培养基等稀释阳性对照（Rosup, 100mM）到常用工作浓度100μM，加入细胞，37℃避光孵育30min-4h，以提高活性氧水平，不同细胞类型存在差异。例如：HeLa细胞需孵育30-60min，MRC5人胚胎成纤维细胞则需孵育90min。

④ ROS探针准备：探针装载前按照1:1000用无血清培养液稀释DCFH-DA，使其终浓度为10μM。

⑤ ROS探针装载：吸除处理药物，加入适当体积稀释好的DCFH-DA工作液。加入的体积需充分盖住细胞。例如：6孔板通常不少于1mL，对于96孔板通常不少于100μL。37℃细胞培养箱内避光孵育30min。

⑥ 细胞清洗：用无血清培养液洗涤细胞1-2次，以充分去除未进入细胞内的DCFH-DA。

2）收集细胞后装载探针（适用于贴壁细胞和悬浮细胞）

① 细胞准备：按照标准方法培养细胞，必须保证检测用细胞状态。按照适当方法，清洗并收集足量的细胞。

② 药物诱导：将收集好的细胞悬浮于适量稀释好的药物，于37℃细胞培养箱内避光孵育，实际诱导时间由药物特性和细胞类型决定。

③（可选）阳性对照：先用无血清培养基稀释阳性对照（abs580232，Rosup, 100mM）到常用工作浓度100μM，加入细胞，37℃避光孵育30min-4h以提高活性氧水平，不同细胞类型存在差异。例如：HeLa细胞需孵育30-60min，MRC5人胚胎成纤维细胞则需孵育90min。

④ ROS探针准备：探针装载前，按照1:1000用无血清培养液稀释DCFH-DA，使其终浓度为10μM。

⑤ 探针装载：除去细胞内药物，离心收集细胞，加入稀释好的探针，使其细胞密度为1.0×106-2.0×107。注意：细胞密度需根据后续的检测体系，检测方法，以及检测总量来进行调整。例如：对于流式分析，单管检测内细胞数目不少于104，也不可多于106。

⑥ 细胞清洗：用无血清细胞培养液洗涤细胞1-2次，以充分去除未进入细胞内的DCFH-DA。

2、荧光显微镜检测

1）对贴壁生长细胞或活组织，可直接在荧光显微镜下观察；对悬浮生长细胞，取25-50μL 细胞悬液滴到一张显微载玻片上，再盖上一张盖玻片。

2）荧光显微镜下，选用FITC滤光片观察荧光，去除背景观察荧光的变化。

3、流式细胞仪分析

1）对贴壁生长细胞，用胰酶消化制备成单细胞悬液；对悬浮生长细胞，直接收集细胞。用0.5-1mL PBS重悬细胞(0.5-1×10^5/mL)。

2）选择流式细胞仪FL1或BL1通道，488nm激发，测定530nm的发射，细胞应可分成两个亚群：ROS阴性细胞仅有很低的荧光强度，ROS阳性细胞有较强的绿色荧光。

DCFH-DA在ROS检测中的应用

Gao[2]等采用标准荧光探针 2′,7′-二氯二氢代荧光黄二醋酸（DCFH-DA）来测定脂质体处理后4T1细胞内的ROS。具体操作流程如下：

1）将4T1细胞接种在35mm培养皿中，密度为8×10^4细胞/孔。

2）细胞培养24h汇合度达到70-80%后，将脂质体（1mL，1mg/mL）加入培养基中。配方处理6h后，用PBS洗涤细胞三次。

3）用DCFH-DA（10μM）染色，孵育30min后，用PBS洗涤细胞三次，然后使用共聚焦激光扫描显微镜进行CLSM成像。

图2 4T1细胞中的ROS成像[2]

无论脂质体类型如何，岩藻糖工程化脂质体在4T1细胞中产生的ROS都比非靶向脂质体多（图2），主要是因为细胞摄取增强。由于DAPC过氧化，DAPC-Fuc在ROS生成方面比DOPC-Fuc更有效。

参考文献：

[1] Rajneesh, Pathak J, Chatterjee A, et al. Detection of Reactive Oxygen Species (ROS) in Cyanobacteria Using the Oxidant-sensing Probe 2',7'-Dichlorodihydrofluorescein Diacetate (DCFH-DA)[J]. Bio Protoc. 2017;7(17):e2545.

[2] Gao Z, Zhang J, Hou Y, et al. Boosting the synergism between cancer ferroptosis and immunotherapy via targeted stimuli-responsive liposomes[J]. Biomaterials.2024;305:122442.