研究旨在开发一种名为“Split RNA Switch”的新型基因调控技术,通过整合多个 RNA开关的输出信号,并利用蛋白质剪接
2025年7月,Nature Communications在线发表了"Split RNA switch orchestrates pre- and post-translational control to enable cell type-specific gene expression"一文,旨在开发一种名为"Split RNA Switch"的新型基因调控技术,通过整合多个 RNA开关的输出信号,并利用蛋白质剪接(protein splicing)机制,实现对目标基因表达的精确调控。
文章亮点
1. ON/OFF比升高25-45倍
"Split RNA开关+漏表达抑制子"将背景噪音压到原来1/25甚至1/45,首次仅靠合成mRNA实现抗生素筛选纯化。
2. 一张mRNA"拼图"兼容多种功能
荧光蛋白、抗生素耐药基因、Cas9等均可剪成两段再合体,验证了该mRNA平台即插即用,几乎适配所有下游效应蛋白。
3. 细胞可编程的生物逻辑电路
用两套正交 split intein,搭建出能同时识别三种 miRNA 的"三输入逻辑门",为复杂细胞亚群精准分类提供新工具。
1、分裂式RNA开关实现基因精确调控
首先将目标蛋白如CRISPR-Cas9拆分为N端/C端片段,分别连接分裂内含肽(split intein)。当这两个片段在细胞内同时存在时,split intein 会催化这两个片段的连接,形成完整的功能性蛋白。
然后设计了两种类型的RNA开关--ON开关和OFF开关。ON开关在目标 miRNA 存在时促进目标蛋白的表达,而OFF开关在目标miRNA存在时抑制目标蛋白的表达。
将 N-端和C-端蛋白片段分别编码在两个ON开关中,并引入一个编码突变C-端片段的OFF开关作为"漏表达抑制子",当 miRNA 阴性细胞中 ON 开关少量漏表达 N - 端片段时,OFF 开关表达的突变 C - 端片段会与之结合形成无功能产物,从而在 miRNA 阴性细胞中有效抑制背景噪音。
图1. ON开关和OFF开关示意图
2、多场景实验验证Split RNA Switch性能
(1)研究人员首先在 HEK293FT 细胞中测试了 Split RNA Switch 的性能。他们使用 miR-21-5p 作为目标 miRNA,通过流式细胞术和荧光显微镜定量分析了荧光蛋白 hmAG1 的表达水平。
结果显示,Split RNA Switch 系统在 miRNA 阳性细胞中显著提高了荧光蛋白的表达,而在 miRNA 阴性细胞中则抑制了背景噪音,使 ON/OFF 比例从单开关的 3 倍提升至 25 倍以上。
图2. 加入漏表达抑制子ON/OFF 比提升至25倍以上
(2)研究人员进一步验证 Split RNA Switch 在控制抗生素耐药基因(如 PAC、HPH 和 BSR)表达方面的应用。
通过在 HeLa细胞中引入 Split RNA Switch 系统,并在不同条件下培养细胞,他们发现该系统能够有效区分 miRNA 阳性和阴性细胞,实现细胞类型特异性的抗生素耐药性,成功在HeLa/HEK293FT混合群里把目标细胞纯度从58%拉到96%。
图3. Split RNA调控耐药基因,在HeLa细胞中存活率>80%
3、多输入逻辑门多重验证细胞身份
研究人员利用 Split RNA Switch 系统构建了多种两输入逻辑门,通过组合不同的 miRNA 响应开关,实现了对多种 miRNA 信号的同时检测和逻辑运算。此外,还利用两套正交的 split intein,成功构建三输入逻辑门,实现了对三种 miRNA 信号的同时检测和逻辑运算。
图4. 构建的两输入(左)、三输入(右)生物逻辑门电路结构
总结与展望
Split RNA开关系统通过"剪-拼-中和"三步走,一举解决漏表达和标记缺乏两大痛点,仅用mRNA递送即可实现高特异性的细胞纯化、基因编辑、安全自杀功能,适配现有脂质体、LNP等mRNA平台。
未来,逻辑门版本可扩展至任意数量输入,有望像"细胞GPS"一样在复杂组织中导航治疗。但仍需注意:漏表达抑制子可能轻微降低 ON 状态活性,RNA 递送效率需优化以适应体内场景,提升逻辑门响应速度,推动技术向临床转化。
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