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基于诱导多能干细胞(iPSC)的3D人体肠道类器官模型构建

2025-07-18 09:21   斯达特生物

近年来,诱导多能干细胞(induced Pluripotent Stem Cells, iPSC)技术的发展为c和疾病模型研究提供了新的可能性。

近年来,诱导多能干细胞(induced Pluripotent Stem Cells, iPSC)技术的发展为再生医学和疾病模型研究提供了新的可能性。研究人员利用iPSC来源的类器官首次在体外成功构建了三维(3D)人体肠道组织模型。实验发现,生长因子FGF-4和WNT-3a在促进CDX2+后肠内胚层特异性模式化以及三维球状体形成中起关键作用。进一步研究表明,FGF-4在肠道类器官培养中的主要作用可能是抑制hPSC向肝谱系分化。此外,短期和长期暴露于FGF-4和CHIR 99021(一种Wnt/β-catenin信号通路激活剂)的培养条件对类器官的发育方向有显著影响。本文综述了相关研究进展,探讨了生长因子在肠道类器官发育中的作用机制,并对未来研究方向提出了展望。肠道是人体重要的消化吸收器官,其复杂的结构和功能依赖于多种细胞类型和信号通路的协同作用。传统的人体肠道研究方法存在诸多限制,例如动物模型与人类生理差异较大,且难以模拟人类肠道的复杂微环境。近年来,诱导多能干细胞(iPSC)技术的出现为构建人体肠道模型提供了新的思路。iPSC具有多向分化潜能,能够分化为多种细胞类型,包括肠道上皮细胞。利用iPSC来源的类器官构建3D人体肠道组织模型,不仅能够模拟人体肠道的结构和功能,还为研究肠道发育、疾病机制以及药物筛选提供了有力工具。

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2. iPSC来源的3D肠道类器官模型构建

2.1 iPSC技术简介

诱导多能干细胞(iPSC)是通过将特定的转录因子(如Oct4、Sox2、Klf4和c-Myc)导入体细胞,使其重编程为具有多能性的干细胞。iPSC具有与胚胎干细胞(ESC)相似的特性,能够分化为多种细胞类型,包括内胚层、中胚层和外胚层来源的细胞。iPSC技术的出现为再生医学和疾病模型研究带来了革命性的变化,因为它不仅避免了胚胎干细胞研究中的伦理问题,还能够利用患者自身的细胞进行个性化治疗。

2.2 3D肠道类器官模型的构建

研究人员利用iPSC来源的类器官首次在体外成功构建了3D人体肠道组织模型。该模型通过模拟人体肠道的发育过程,诱导iPSC分化为后肠内胚层细胞,并进一步形成具有肠道特征的三维球状体。这一过程涉及多个关键步骤,包括细胞的增殖、分化和组织形成。研究人员发现,生长因子FGF-4和WNT-3a在这一过程中起关键作用,能够促进CDX2+后肠内胚层的特异性模式化,并诱导三维球状体的形成。

3. 生长因子在肠道类器官发育中的作用

3.1 FGF-4的作用

2015年的一项研究指出,FGF-4在肠道类器官培养中的主要作用可能是抑制人类多能干细胞(hPSC)向肝谱系的分化。这一发现表明,FGF-4不仅在促进肠道内胚层细胞的增殖和分化中发挥作用,还通过抑制其他谱系的分化,确保细胞向肠道方向发育。FGF-4通过激活FGF受体,调节细胞内的信号通路,从而影响细胞的命运决定。

3.2 WNT-3a的作用

WNT-3a是Wnt信号通路的重要配体之一,通过激活Wnt/β-catenin信号通路,促进细胞的增殖和分化。在肠道类器官的发育过程中,WNT-3a与FGF-4协同作用,诱导后肠内胚层细胞的特异性模式化。研究表明,WNT-3a能够维持肠道类器官的干细胞特性,促进其长期增殖。

3.3 CHIR 99021的作用

CHIR 99021是一种小分子化合物,能够激活Wnt/β-catenin信号通路。2017年和2018年的两项研究指出,短期暴露于FGF-4和CHIR 99021的培养条件下,类器官更倾向于形成十二指肠类器官。这表明CHIR 99021通过激活Wnt信号通路,能够引导类器官向特定的肠道区域发育。长期暴露于FGF-4和CHIR 99021则引导类器官向回肠组织的基因表达模式发展。

3.4 不同培养条件对类器官发育的影响

研究表明,短期和长期暴露于FGF-4和CHIR 99021的培养条件对类器官的发育方向有显著影响。短期暴露条件下,类器官倾向于形成十二指肠类器官,这可能与十二指肠在胚胎发育早期的快速分化有关。而长期暴露条件下,类器官则向回肠组织的基因表达模式发展,这可能与回肠在胚胎发育后期的成熟过程有关。值得注意的是,当完全缺乏CHIR 99021和FGF-4的添加时,体外实验中未能观察到后肠球状体的形成。这一结果表明,FGF-4和CHIR 99021在肠道类器官的形成和发育中不可或缺。

4. 研究意义与应用前景

4.1 疾病模型构建

利用iPSC来源的3D肠道类器官模型能够模拟人体肠道的结构和功能,为研究肠道疾病提供了有力工具。例如,通过构建特定基因突变的iPSC来源的类器官模型,可以深入研究遗传性肠道疾病(如囊性纤维化)的发病机制。此外,该模型还可用于研究肠道炎症性疾病(如克罗恩病和溃疡性结肠炎)的病理生理过程,为开发新的治疗方法提供理论依据。

4.2 药物筛选与毒性测试

3D肠道类器官模型为药物筛选和毒性测试提供了一个高度生理相关的平台。与传统的二维细胞培养模型相比,该模型能够更准确地模拟人体肠道的微环境,从而更真实地反映药物的吸收、代谢和毒性。利用该模型进行高通量药物筛选,可以快速评估药物的疗效和安全性,降低药物研发成本,提高研发效率。

4.3 再生医学应用

iPSC来源的3D肠道类器官模型为再生医学提供了新的思路。通过优化培养条件,诱导类器官向特定的肠道区域发育,有望开发出用于肠道修复和再生的细胞治疗方法。例如,在肠道损伤或疾病导致的肠道功能障碍时,利用该模型培养的肠道类器官可以移植到患者体内,恢复肠道的正常功能。

5. 研究展望

尽管利用iPSC来源的类器官构建3D人体肠道模型已经取得了一定的进展,但仍有许多问题需要进一步研究。例如,目前的类器官模型在结构和功能上仍与人体肠道存在差异,如何进一步优化培养条件,使其更接近人体肠道的生理状态是一个重要的研究方向。此外,如何提高类器官的存活率和功能稳定性,以及如何实现类器官的大规模生产和应用,也是未来研究需要解决的问题。未来的研究可以结合基因编辑技术、生物材料和生物工程等多学科手段,进一步完善iPSC来源的3D肠道类器官模型,为其在疾病研究和再生医学中的应用提供更坚实的基础。

6. 结论

研究人员利用iPSC来源的类器官首次在体外成功构建了3D人体肠道组织模型。实验发现,生长因子FGF-4和WNT-3a在促进CDX2+后肠内胚层特异性模式化以及三维球状体形成中起关键作用。FGF-4在肠道类器官培养中的主要作用可能是抑制hPSC向肝谱系分化。短期和长期暴露于FGF-4和CHIR 99021的培养条件对类器官的发育方向有显著影响。该研究不仅为理解肠道发育机制提供了新的视角,还为疾病模型构建、药物筛选和再生医学应用提供了有力工具。未来的研究将进一步优化类器官模型,探索其在临床中的应用潜力。

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