m6A/m5C/m1A调节基因在肝细胞癌(HCC)中的预后和在免疫微环境中发挥的功能仍然未知。
导语
m6A/m5C/m1A调节基因在肝细胞癌(HCC)中的预后和在免疫微环境中发挥的功能仍然未知。
背景介绍 以前发表的 文章 通常只是探究m6A相关基因的预后或使用m6A相关基因构建风险模型,今天小编为大家介绍一 篇使用m6A/m5C/m1A三种甲基化修饰共同确定的风险模型。本章也是成功发表在8分+的 FII,题目为 The m6A/m5C/m1A Regulated Gene Signature Predicts the Prognosis and Correlates With the Immune Status of Hepatocellular Carcinoma。
数据介绍 来自TCGA的公共数据。 分析流程
结果解析 01 m6A/m1A/m5C调控基因的表达水平
作者首先从文献中鉴定了45个m6A/m5C/m1A调节基因。与正常肝组织相比,在肝细胞癌组织中观察到m6A/m1A/m5C调节基因的表达水平存在差异。在HCC组织中,41个(91.11%)m6A/m1A/m5C调节基因具有统计学意义。IGF2BP1,IGF2BP3,IGF2BP2,DNMT3B,DNMT3A,DNMT1,NSUN7,NSUN5,ALYREF,METTL3,TRMT6和TRMT61A在HCC组织中相对于正常组织过表达(图1)。
图1
02 m6A/m1A/m5C调控基因的功能富集 GO注释表明,m6A/m1A/m5C调控基因参与RNA修饰和甲基化、大分子甲基化、mRNA甲基化和修饰、RNA调控和mRNA稳定性、ncRNA加工、mRNA分解代谢过程调控、RNA剪接、mRNA分解代谢过程、mRNA转运等过程 。KEGG富集涉及癌症,剪接体和RNA转运中的microRNA。 03 主成成分分析
根据45个m6A/m1A/m5C调控基因的表达数据,以2为最佳k值,将374例肝细胞癌患者分为1组和2组(图2A–C)。PCA显示1组和2组之间存在显著差异(图2D)。K-M生存分析表明,1类患者的OS明显优于2类患者(图2E)。此外,两组组的HCC患者在临床分期,T期,肿瘤分级和fustat状态方面存在统计学显著差异(图2F)。
图2
04 不同亚组差异表达基因的功能富集 与1组相比,2组肿瘤组织显示出371个分组相关的差异表达基因 ,包括315个上调基因和56个下调基因。GO富集显示 m6A/m1A/m5C调节基因亚组参与信号释放,神经递质转运,药物分解代谢过程,蛋白质分泌的正向调节,分泌调节,钙离子调节的胞吐作用,激素转运,蛋白质分泌的调节(图3A-C )。KEGG富集显示其参与胆汁分泌,神经活性配体 - 受体相互作用, 和PPAR信号通路。
图3
05 亚组差异表达基因的预后 单因素Cox回归分析显示,127个差异表达基因与HCC患者预后不良相关(P<0.05),37个差异表达基因与HCC患者预后不良相关(P<0.001)。 图3E-F 显示了这37个差异表达基因在HCC组织中的表达水平。 06 基于37个差异表达基因进行聚类和预后
37个与亚组相关的差异表达基因将374名HCC患者分为1组和2组(图4A-C)。PCA显示1组和2组之间存在显著差异(图4D)。K-M生存分析显示,1组HCC患者的OS明显优于2类患者(图4E)。在1类和2类的HCC患者在临床分期、T期和fustat状态方面存在统计学上显著差异(图4F)。
图4
07 构建m6A/m1A/m5C风险模型
单因素Cox回归分析显示,YBX1、TRMT6、RRP8、YTHDF2、LRPPRC、NSUN4、YTHDF1、TRMT10C、IGF2BP3、METTL3、DNMT3A、DNMT1、NOP2、TRMT61B、RBM15B、KIAA1429、ALYREF、HNRNPA2B1、TRMT61A、ALKBH1、HNRNPC、RBMX、DNMT3B、BMT2、WTAP、NSUN3、TRDMT1、NSUN2、NSUN5、ZC3H13、IGF2BP1、YTHDC1和IGF2BP2是HCC患者预后的不良影响因素(图5A)。
图5
采用LASSO算法确定最小λ值,基于9个m6A/m1A/m5C调控基因构建风险模型特征(图5B-C)。图5D显示了高危组和低危组YBX1,ZC3H13,YTHDF1,TRMT10C,YTHDF2,RRP8,TRMT6,LRPPRC和IGF2BP3表达水平之间的关系。这9个基因表达水平与风险评分之间显著相关。
作者调查了HCC患者的风险评分与生存时间之间的关系。在基于YBX1、ZC3H13、YTHDF1、TRMT10C、YTHDF2、RRP8、TRMT6、LRPPRC和IGF2BP3表达水平的风险模型中,K-M生存分析显示高危组HCC患者的预后较差(图5F)。此外,作者收集的HCC组织显示出YBX1,ZC3H13,YTHDF1,TRMT10C,YTHDF2,RRP8,TRMT6,LRPPRC和IGF2BP3显著高表达(图6),与TCGA数据库中的基因表达结果基本一致。
因此,最终构建了包含m6A/m1A/m5C调节基因YBX1,ZC3H13,YTHDF1,TRMT10C,YTHDF2,RRP8,TRMT6,LRPPRC和IGF2BP3的列线图(图7)。
图7
08 m6A/m1A/m5C风险模型的临床价值
根据对高风险组和低风险组HCC患者临床病理特征的分析,风险模型与HCC患者的肿瘤分级,临床分期,T期,远处转移和fustat状态有关(图8A)。单因素Cox回归分析显示,临床分期、T期和风险评分是HCC患者预后异常的危险因素(图8B)。多因素Cox回归分析显示,远处转移和风险评分是HCC患者预后不良的危险因素(图8C)。
图8
09 风险模型高评分亚组的功能富集
高风险评分与剪接体调控、细胞周期、碱基切除修复、RNA降解、卵母细胞减数分裂、泛素介导的蛋白水解、嘧啶代谢、DNA复制、同源重组、错配修复、核苷酸切除修复、胞质DNA传感途径、内吞作用、神经营养因子信号通路、基础转录因子、癌症通路、WNT信号通路等相关(表1)。
表1
10 风险模型signature的免疫浸润
在45个m6A/m1A/m5C调节基因中,幼稚B细胞,记忆B细胞,CD4记忆静息T细胞,CD4记忆活化T细胞,M0巨噬细胞,M1巨噬细胞,静息肥大细胞和嗜酸性粒细胞的表达水平存在显著差异(图9A)。幼稚B细胞,记忆B细胞,T细胞CD8,CD4记忆静息T细胞,M0巨噬细胞和嗜酸性粒细胞的表达水平在37个cluster相关的差异表达基因亚组之间显著差异(图9B)。在高危组和低危组中,基质评分,CD4记忆静息T细胞,滤泡辅助T细胞,活化的NK细胞,单核细胞,M0巨噬细胞,M1巨噬细胞,静息肥大细胞,嗜酸性粒细胞和嗜中性粒细胞的表达水平存在显著差异(图9C)。风险评分与基质评分、CD4记忆静息T细胞、CD4记忆活化T细胞、滤泡辅助T细胞、M0巨噬细胞、M1巨噬细胞和静息肥大细胞的水平显著相关(图9D–I)。
图9
相关分析显示,免疫细胞标志物表达水平与HCC中的风险评分水平相关(图10),IRF5、ITGAM、CD86、NRP1、CTLA4、STAT5A、HAVCR2、CSF1R、STAT1、CD19、ITGAX、CD68、TGFB1、CD3D、PDCD1、HLA-DPB1、HLA-DRA、TNF、CCR8、IFNG、VSIG4、BCL6、IL10、HLA-DPA1、STAT5B、MS4A4A、STAT6、LAG3、HLA-DQB1、KIR2DL4、STAT3和IL21 的表达水平在高风险组和低风险组之间差异显著(图11)。
图10
图11
小编总结 本研究探讨了45个m6A/m1A/m5C调节基因在肝细胞癌进展中的作用,观察了m6A/m1A/m5C调节基因亚组间总体生存、临床分期、T期、肿瘤分级等临床特征的显著差异。构建 风险模型的基因YBX1、ZC3H13、YTHDF1、TRMT10C、YTHDF2、RRP8、TRMT6、LRPPRC和IGF2BP3在独立验证数据中肝细胞癌组织中的表达与TCGA数据库中的表达结果一致。 此外,构建的风险模型评分较高与预后不良、肿瘤分级、临床分期、T期、远处转移和发源状态相关,是HCC患者预后不良的独立危险因素。 本文最大的亮点在于使用m6A/m1A/m5C的调节基因共同构建模型,而不像以往文章单独使用m6A,非常新颖。值得学习。
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