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Cell:相生相克,内源sgRNA能够下调CRISPR系统表达

2021-01-13   生物世界
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CRISPR簇 是一个广泛存在于细菌古菌基因组中的特殊DNA重复序列家族,充当了 防御外源遗传物质的“基因武器” CRISPR全称Clustered Regularly Interspersed Short Palindromic Repeats—成簇的规律间隔的短回文重复序列,分布在40%的已测序细菌和90%的已测序古细菌当中。

其中,CRISPR序列由众多短而保守的重复序列区 (repeat) 和间隔区 (spacer) 组成。重复序列区含有回文序列,可以形成发卡结构。而间隔区比较特殊,它们是被细菌俘获的外源DNA序列。这就相当于细菌免疫系统的“黑名单”,当这些外源遗传物质再次入侵时,CRISPR/Cas系统就会予以精确打击。而在上游的前导区 (leader) 被认为是CRISPR序列的启动子。另外,在上游还有一个多态性的家族基因,该基因编码的蛋白均可与CRISPR序列区域共同发生作用。因此,该基因被命名为CRISPR关联基因 (CRISPR associated,Cas) 。Cas基因与CRISPR序列共同进化,形成了在细菌中高度保守的CRISPR/Cas系统。


CRISPR免疫分为三个阶段。在第一个阶段中,当噬菌体病毒首次入侵宿主细菌,病毒的双链DNA被注入细胞内部。CRISPR/Cas系统会从这段外源DNA中截取一段序列作为外源DNA的“身份证”,然后将其作为新的间隔序列被整合到基因组的CRISPR序列之中。因此,这段与间隔序列对应的“身份证”被称为原间隔序列 (protospacer) 。然而,“身份证”的选取并不是随机的。原间隔序列向两端延伸的几个碱基都十分保守,被称为原间隔序列临近基序 (protospacer adjacent motif,PAM) (图2)


第二阶段,当病毒再次入侵,CRISPR序列会在前导区的调控下转录出pre-CRISPR-derived RNA (pre-crRNA) 和trans-acting crRNA (tracrRNA) 。其中,tracrRNA是由重复序列区转录而成的具有发卡结构的RNA,而pre-crRNA是由整个CRISPR序列转录而成的大型RNA分子。随后,pre-crRNA,tracrRNA以及Cas9编码的蛋白将会组装成一个小型“兵工厂”。它将根据入侵者的类型,选取对应的“身份证” (间隔序列RNA) ,并在RNase Ⅲ的协助下对这段间“身份证”进行剪切,最终形成一段短小的crRNA (包含单一种类的间隔序列RNA以及部分重复序列区) 。crRNA,Cas9以及tracrRNA组成的复合物,就是最终的“战斗武器” (图3)


最后,在第三阶段“靶向干扰”过程中 (图4) ,Cas9/tracrRNA/crRNA复合物就像是一枚制导导弹,可以对入侵者的DNA进行精确的打击。这个复合物将扫描整个外源DNA序列,并识别出与crRNA互补的原间隔序列。这时,复合物将定位到PAM/原间隔序列的区域,DNA双链将被解开,形成R-Loop。crRNA将与互补链杂交,而另一条链则保持游离状态。随后,Cas9蛋白HNH酶活性将剪切crRNA互补的DNA链,而其RuvC活性位点将剪切非互补链。最终,Cas9强大的火力使双链断裂 (DSB) 形成,外源DNA的表达被沉默。


重要的是,所有免疫系统正确地发挥作用必须区分“自我”和“非自我”部分,需要在提供针对各种病原体相关抗原的有效活性同时,避免引起自身免疫反应。然而,CRISPR-Cas免疫系统在其单细胞宿主内是如何调节免疫强度的目前还不清楚。一些研究也表明,CRISPR-Cas的表达可受到包括噬菌体感染,膜应力,代谢状态等因素的调节。在某些情况下,位于CRISPR-Cas位点之外的转录因子可以与CRISPR-Cas启动子相互作用达到调控CRISPR-Cas表达的目的。尽管如此,针对Ⅱ-型CRISPR-Cas系统的转录因子却很少发现。

2021年1月8日,美国约翰・霍普金斯大学医学院 Joshua W. Modell 团队在 Cell 杂志上发表了题为: A natural single-guide RNA repurposes Cas9 to autoregulate CRISPR-Cas expression 的研究论文,研究人员发现, 细菌可编码内源 sgRNA-tracr-L,直接使用 Cas9 蛋白下调 CRISPR-Cas 系统表达


如上文所介绍的,除了前crRNA外,化脓链球菌CRISPR-Cas系统还含有第二种非编码RNA,tracrRNA,在CRISPR免疫的所有三个阶段发挥作用,tracrRNA由两个产生长 (tracr-L) 和短 (tracr-S) 形式的启动子转录而来,这两种启动子都含有RNAseII加工位点。tracr-S目前已有研究,但目前尚不清楚tracr-L的作用是什么,也不清楚为什么会产生两种形式的tracrRNA。

为了弄清tracr-L的作用,作者利用一个 tracrRNA 突变体进行研究,结果发现tracr-L突变后能够增强宿主对噬菌体的抗性 (图5)

图5 Tn-seq reveals a tracrRNA mutant with enhanced CRISPR immunity


进一步研究发现,tracr-L对CRISPR-Cas免疫过程的三个阶段都存在负调控作用,而这种调控机制的产生来源于tracr-L可以作为一种天然的sgRNA 介导Cas9蛋白结合在启动子区域,从而抑制Cas9 基因的表达 (图6)


图6 tracr-L is a natural sgRNA that directs Cas9 to repress its own promoter


进一步实验表明,在野生型细胞中,tracr-L能够维持 CRISPR-Cas系统处于低活性状态。作者还发现,在没有噬菌体的情况下,与野生型相比,tracr-L突变细胞中有更多的自我靶向类型。相比于野生型,tracr-L突变细胞数量在第一天和第二天分别下降为原始数量的33%和3% (图7)


这些结果都表明tracr-L可以抑制CRISPR系统活性从而避免自身免疫。进一步对于其他Ⅱ-型系统的分析发现,tracr-L介导的这种调控机制在其他II-A CRISPR-Cas 系统中是很保守的。


图7 tracr-L is a master switch that controls autoimmunity and responds to crRNA spacer identity


论文链接:

https://www.cell.com/action/showPdf?pii=S0092-8674%2820%2931687-1


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